Identification

A. - A 1 ml de la teinture mère d'Anagallis arvensis, ajoutez 1 ml d'eau. Il se produit un trouble.
B. - A 1 ml de la teinture mère d'Anagallis arvensis, ajoutez 10 ml d'eau.
Agitez. Il se forme une mousse persistante (saponosides).
C. - A 1 ml de la teinture mère d'Anagallis arvensis, ajoutez 0,1 ml de la solution de chlorure ferrique R1. Il apparaît une coloration vert foncé (polyphénols).
D. - Opérez par chromatographie sur couche mince (2.2.27) en utilisant une plaque recouverte d'un gel de silice approprié.
Solution à examiner. Teinture mère d'Anagallis arvensis à examiner.
Solution témoin. Dissolvez 10 mg d'hypéroside R dans de l'alcool R et complétez à 10 ml avec le même solvant.
Déposez séparément sur la plaque, en bandes, 20 ml de la solution à examiner et 10 ml de la solution témoin. Développez sur un parcours de 10 cm avec un mélange de 10 volumes d'acide formique anhydre R, de 10 volumes d'eau et de 80 volumes d'acétate d'éthyle R. Laissez sécher la plaque à l'air. Examinez en lumière ultraviolette à 365 nm. Le chromatogramme obtenu avec la solution témoin présente une bande de fluorescence brun-gris de Rf voisin de 0,50. Le chromatogramme obtenu avec la solution à examiner présente généralement deux bandes de fluorescence brun-gris à un Rf voisin de 0,45 et 0,55, une bande de fluorescence bleue de Rf voisin de 0,60 et une bande de fluorescence rouge voisine du front du solvant. Pulvérisez sur la plaque une solution de diphénylborate d'aminoéthanol R à 10 g/l et de macrogol 400 R à 50 g/l dans du méthanol R. Examinez en lumière ultraviolette à 365 nm. Le chromatogramme obtenu avec la solution témoin présente une bande de fluorescence orange de Rf voisin de 0,50. Le chromatogramme obtenu avec la solution à examiner présente une bande de fluorescence orange de Rf voisin de 0,45, une bande de fluorescence jaune de Rf voisin de 0,55 et une bande de fluorescence jaune orangé au front de solvant.